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常見問題 行業(yè)動態(tài)

人鈣衛(wèi)蛋白elisa試劑盒實(shí)驗(yàn)原理

人鈣衛(wèi)蛋白elisa試劑盒實(shí)驗(yàn)原理

人鈣衛(wèi)蛋白elisa試劑盒應(yīng)用雙抗體夾心法測定標(biāo)本中人鈣衛(wèi)蛋白(calprotectin)水平。用純化的人鈣衛(wèi)蛋白(calprotectin)抗體包被微孔板,制成固相抗體,往包被單抗的微孔中依次加入鈣衛(wèi)蛋白(calprotectin),再與HRP標(biāo)記的鈣衛(wèi)蛋白(calprotectin)抗體結(jié)合,形成抗體-抗原-酶標(biāo)抗體復(fù)合物,經(jīng)過徹底洗滌后加底物TMB顯色。TMB在HRP酶的催化下轉(zhuǎn)化成藍(lán)色,并在酸的作用下轉(zhuǎn)化成最終的黃色。顏色的深淺和樣品中的鈣衛(wèi)蛋白(calprotectin)呈正相關(guān)。用酶標(biāo)儀在450nm波長下測定吸光度(OD值),通過標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算樣品中人鈣衛(wèi)蛋白(calprotectin)濃度。

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1.包被:抗原/抗體,固相化

2.反應(yīng): 1)待測抗體/抗原; 2)酶標(biāo)抗原/抗體

3.洗滌:使結(jié)合在固相上的抗原抗體復(fù)合物與未結(jié)合的分離

4.底物顯色:定性/定量分析

常用的酶與底物:

酶底物顯色測定波長辣根過氧化物酶horseradish pero

xidase,HRP鄰苯二胺(OPD)橘紅色492nm四甲基聯(lián)苯胺(TMB)黃色450nm堿性磷酸酶alkaline phosohatase,AP4-硝基酚磷酸鹽(p-NPP)黃色405nm終止液:2mol/L  H2SO4


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常見問題分析

Q1.標(biāo)曲不顯色或顯色很弱,樣本顯色

溶解標(biāo)準(zhǔn)品以及倍比稀釋時(shí),未渦旋震蕩或不夠充分。

標(biāo)準(zhǔn)品溶解、倍比稀釋時(shí)均需要渦旋震蕩以保證充分混勻。單純依靠移液器反復(fù)吹打,效率較低、效果也不一定最佳。

Q2.標(biāo)曲和樣本均不顯色

在孵育階段靜置在桌面上,這樣非常不利于抗原抗體之間的充分接觸,導(dǎo)致顯色偏弱。

推薦孵育階段,使用ELISA專用的微孔板振蕩器,調(diào)至合適的頻率,使抗原抗體充分接觸,保證結(jié)合效果。如果排除上述原因,有可能是漏加了某個(gè)組分,如檢測抗體、酶等。對于比較馬虎的新手,一定要做好標(biāo)記和記錄,或者使用添加染料的ELISA試劑盒。

Q3.標(biāo)曲顯色,樣本不顯色

當(dāng)樣本中目的蛋白濃度極低或者樣本中干擾因素較強(qiáng),就無法檢測到。目前ELISA仍然是蛋白檢測靈敏度最高的方法,與不同技術(shù)結(jié)合后,衍生出了多種類型的ELISA,提高了檢測靈敏度。

對于目的蛋白濃度特別低的樣本,可以嘗試用高敏ELISA,但這也并不意味著一定能檢測到樣本濃度,只能說可以提高樣本的可測率,并使結(jié)果更加可靠。因?yàn)橥ǔS闷胀‥LISA檢測的樣本OD值都偏低,而高敏ELISA可提高樣本OD值,使之盡量位于標(biāo)曲范圍內(nèi),得到的數(shù)值也更加可信。

Q4.標(biāo)曲和樣本都顯色,但復(fù)孔的CV大

這個(gè)問題就跟移液器和實(shí)驗(yàn)者的操作有關(guān)了。移液器的使用維護(hù)不規(guī)范,就會造成移液的誤差較大;實(shí)驗(yàn)者自身的操作習(xí)慣、加樣的一致性對復(fù)孔的CV也有很大影響。

掌握移液器的正確使用和維護(hù)。關(guān)于個(gè)人的操作可練習(xí)移液動作、加快速度,確保移液的精密度。

Q5.本底偏高,樣本值測不到

標(biāo)曲的本底即Blank孔的OD值一般要求控制在0.1以下(對于高敏ELISA可以適當(dāng)放寬要求)。尤其是樣本值特別低的時(shí)候,本底過高會掩蓋目的信號,導(dǎo)致無法測到樣本值。

在加入TMB顯色后,需實(shí)時(shí)觀察標(biāo)曲顯色情況。通常在S5孔有肉眼可見的微弱藍(lán)色,即可終止反應(yīng)。

Q6.樣本經(jīng)不同梯度稀釋,計(jì)算得到的樣本值差異較大

有時(shí)候我們不清楚樣本中目的蛋白的濃度如何,應(yīng)該如何稀釋,那么我們就會做下預(yù)實(shí)驗(yàn),確定稀釋倍數(shù)。然而有時(shí)候同一樣本做了幾個(gè)不同梯度稀釋后,計(jì)算得到的樣本值之間差異較大,應(yīng)該選擇哪一個(gè)稀釋倍數(shù)呢?

這里涉及到了基質(zhì)效應(yīng)。通常血清樣本加樣量較高時(shí),血清中的各種蛋白會抑制抗原抗體的接觸,基質(zhì)效應(yīng)較明顯。而經(jīng)過稀釋后,干擾因素也隨之稀釋,影響就會較小。當(dāng)某兩個(gè)梯度稀釋后,計(jì)算得到的樣本值接近時(shí),我們就可以認(rèn)為在該稀釋梯度時(shí),樣本中的干擾因素影響較小,計(jì)算得到的值也是接近真實(shí)的。然而這樣的稀釋是針對目的蛋白濃度較高的樣本而言。對于濃度很低的樣本,經(jīng)過多倍稀釋后,就更加測不到了,此時(shí)可按照廠家說明書推薦的加樣方式操作。

Q7.不同試劑盒中的組分能否通用

除非是公用的試劑如洗液、檢測緩沖液,其它組分不建議用其它試劑盒的組分,甚至是同一指標(biāo)不同批次的試劑盒里的組分。這些組分(包括標(biāo)準(zhǔn)品、標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液、檢測抗體、酶等)都是經(jīng)過優(yōu)化的,如果貿(mào)然使用其它試劑盒的組分,有可能對結(jié)果產(chǎn)生影響。



 

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